La calidad del semen porcino es un punto importante a considerar en una granja de cerdos como así también en centros de inseminación artificial.
La evaluación de la calidad del semen servirá para determinar la fertilidad potencial del eyaculado recolectado y por lo tanto del padrillo al cual se le realizó la extracción. Además, permitirá determinar la cantidad de dosis a obtenerse por eyaculado.
Los métodos de valorización de la calidad seminal convencional pueden dividirse en dos etapas:
- Evaluación macroscópica
- Evaluación microscópica
La evaluación macroscópica consiste en la observación y medición de características como:
- Volumen
- Aspecto
- Olor
Por otro lado, la evaluación microscópica consiste en determinar factores como son:
- Motilidad
- Concentración espermática
- Morfología espermática
Para realizar esta tarea es importante contar en el microscopio con una óptica adecuada que posea objetivos de contraste de fases, dado que es una óptica que hace claramente visibles las estructuras de objetos no teñidos en preparaciones vivas. [registrados]
Volumen
Después de la pubertad, que ocurre entre los cinco y ocho meses de edad, se incrementa la cantidad de células espermáticas y el volumen del eyaculado que se corresponde con el crecimiento testicular, hasta que el verraco alcanza los 18 meses de edad.
El volumen aproximado de un eyaculado de un cerdo en edad reproductiva podría encontrarse entre 100 y 300 ml.
La frecuencia de extracción incidirá en el volumen de recolección y también en la concentración espermática del eyaculado. Frecuencias de extracción superiores a las recomendadas podrán generar además un incremento de anomalías en los espermatozoides del eyaculado.
Aspecto
El color del semen variará en función de la fracción del eyaculado recolectado, las cuales diferirán en la concentración espermática que posean.
Si la concentración espermática es alta, el color será blanco lechoso, por el contrario, cuando el color es blanco acuoso, la concentración espermática será menor.
Sustancias rojas o amarillentas presentes en el eyaculado indican que hubo contaminación durante la extracción (sangre, orina, líquido prepucial u otros cuerpos extraños) y ese eyaculado debería descartarse.
Olor
Si el semen fue contaminado con líquido del divertículo prepucial, presentará un mal olor. Esto indica que el proceso de recolección no ha sido realizado en forma apropiada.
Motilidad espermática
La motilidad es el parámetro más comúnmente usado para determinar la viabilidad espermática en los eyaculados.
La movilidad espermática debe determinarse colocando una gota pequeña en un portaobjeto pre-calentado (38º C), tapando la gota con un cubreobjeto de tamaño adecuado (10×10 mm) y mirando la gota con a 200-400 aumentos en un microscopio de contraste.
La determinación de este parámetro se realiza generalmente de forma subjetiva, es decir, que un operador estima el porcentaje de espermatozoides que muestran motilidad progresiva y lineal.
Si hay movimiento espermático anormal (movimientos en círculo, adhesión al vidrio, aglutinación) esto debe siempre anotarse, y repetir la observación con otras gotas.
En un eyaculado considerado “normal” la motilidad espermática es usualmente de al menos un 70%.
Concentración espermática
Este parámetro se verá influido por factores como: edad; frecuencia extracción; época del año. La importancia de la concentración espermática se debe a que a partir de esta, y del volumen del eyaculado, se determinará el número total de espermatozoides del eyaculado y este valor nos indicará la dilución a efectuar para cada dosis de inseminación.
Los métodos analíticos para su cálculo pueden ser manuales o automáticos. Los hematocitómetros (método manual: cámara de Bürker, Neubauer o Thoma entre otras se han visto reemplazados por aparatos electrónicos (método automático), principalmente colorímetros, debido a su mayor rapidez de cálculo (Camus et al. 2011).
En granja, los métodos de medición aplicables son los conteos en cámara y mediante fotómetros. Independientemente del método utilizado, se deben considerar la preparación de las muestras que se utilizarán para el recuento y la calibración períodica de los instrumentos que se utilicen para tal fin.
Morfología espermática
El análisis de las alteraciones en la morfología del espermatozoide es de gran importancia para poder determinar la capacidad reproductiva y futuro del padrillo. Si el porcentaje de anormalidades en la estructura de la célula espermática es elevado, el verraco será infértil o estéril.
En general, Levis, D., 2004, considera que la mayoría de las anormalidades observadas en el espermatozoide son: defectos a nivel de la cabeza, a nivel de la cola y presencia de gota citoplasmática.
se deben desechar los eyaculados que presenten un porcentaje de formas anormales superior al 20%.
Principales alteraciones en la morfología del espermatozoide
Anomalías de la cabeza
Las diferentes formas anormales de la cabeza (macro y microcéfalos) tienen su origen a nivel testicular. Generalmente, estos espermatozoides se mueven pero no llegan a fecundar al ovocito.
Por otra parte, estas células son difíciles de identificar durante el análisis de motilidad. Las cabezas sueltas aparecen a nivel del epidídimo y se deben a que la estructura de la pieza intermedia se vuelve más frágil y por un efecto mecánico se rompe.
El acrosoma es una parte fundamental del espermatozoide y su integridad tiene una relación directa con la fertilidad, ya que éste contiene toda una carga antigénica y enzimática de activa participación en la fertilización del ovocito.
Anomalías de la pieza intermedia
El defecto más frecuente a este nivel es la pieza media distal doblada. Generalmente se originan en la cola del epidídimo.
Anomalías de la cola
Ocasionan alteraciones del movimiento celular. Estos espermatozoides no son fértiles.
Gotas citoplasmáticas
Pueden ser de localización proximal o distal y son indicadoras del grado de madurez del espermatozoide.
La gota es el resto de la membrana que acompaña a la célula durante su formación en el testículo. A medida que la célula va madurando, la membrana se desplaza desde la cabeza a la cola. En consecuencia, las gotas proximales indican formas más inmaduras que las gotas distales.
Referencias
Arisnabarreta ER, Allende RA. 2017. Manual de Inseminación Artificial en porcinos. Disponible en: http://www.ciavt.com.ar/uploads/Banner/72/MANUAL-DE-INSEMINACION-ARTIFICIAL-EN-PORCINOS-Arisnabarreta-Allende.pdf.
Colenbrander B, Feitsma H, Grooten HJ. 1993. Optimizing semen production for artificial insemination in swine. Journal of Reproduction and Fertility. 48: 207-15.
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