El Síndrome Reproductivo y Respiratorio Porcino (PRRS, por sus siglas en inglés Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome) es una enfermedad vírica que produce alteraciones en la reproducción, sobre todo en cerdas en el último tercio de gestación, y trastornos respiratorios en cerdos en crecimiento (revisado en Lunney et al., 2016). PRRSV
La enfermedad está producida por el virus del PRRS (PRRSV), clasificado en la familia Arteriviridae y dividido en dos especies dentro del género Betaarterivirus, denominadas oficialmente Betaarterivirus suid 1 y Betaarterivirus suid 2, pero conocidas como PRRSV-1 y PRRSV-2.
Características del PRRSV relevantes para el establecimiento de programas de control
El PRRSV tiene algunas características que hacen particularmente complicado establecer programas de control eficiente. Entre ellas, hay dos que destacan:
- Elevada variabilidad. Una de las características más notables del PRRSV es su gran variabilidad, con dos especies distintas y diversos linajes tanto en PRRSV-2 (Yim-Im et al., 2023) como en PRRSV-1 (Shi et al., 2010; Balka et al., 2018).
Esta variabilidad genómica se traduce en una elevada diversidad patogénica y en la composición antigénica, la cual limita la protección cruzada entre individuos aislados.
- Persistencia de la infección. Cuando un animal se infecta se produce una fase de viremia tras la cual el virus permanece acantonado en algunas poblaciones de macrófagos durante periodos prolongados de tiempo, lo que provoca la excreción intermitente de virus infecciosos.
Los datos existentes indican que el virus puede permanecer acantonado en las tonsilas durante periodos de hasta 251 días (Wills et al., 2003), aunque el tiempo de persistencia varía entre individuos y podría depender de factores como la edad y la raza (Mainquist-Whigham et al., 2025).
Esto implica que los animales aparentemente sanos, que se han infectado meses antes, pueden ser fuente de infección para animales susceptibles puestos en contacto con ellos y perpetuar la infección en una población.
Vigilancia epidemiológica en granjas infectadas
Debido a la capacidad del PRRSV para persistir en los individuos y las poblaciones infectadas, es de vital importancia establecer programas de vigilancia epidemiológica que permitan determinar con precisión si el virus circula o no en una determinada población.
Por ello, a lo largo del tiempo se han desarrollado distintas estrategias de muestreo, particularmente en las reproductoras. Entre las muestras empleadas destacan las siguientes:
- Muestras de cerdas
En los primeros años tras la descripción de la enfermedad los esfuerzos se centraron en la identificación de las reproductoras portadoras.
El uso de suero para la detección de portadores asintomáticos se descartó inmediatamente, ya que la viremia cesa mucho antes de que finalice el período de portador.
Igualmente, el uso de fluidos orales en las reproductoras es controvertido. Dado que el virus se acantona principalmente en las tonsilas, recientemente se han desarrollado técnicas de raspado tonsilar y de raspado oro-tonsilar que facilitan la toma de muestras y tienen una sensibilidad muy superior a la del suero y los fluidos orales (Li et al., 2024a,b).
Incluso se ha propuesto que tienen una mayor capacidad de detección de portadoras que las muestras de lechones (Li et al., 2025), aunque su valor real está por demostrar.
- Muestras de lechones
Dado que la circulación del PRRSV entre las reproductoras conduce a la infección
transplacentaria, incluso en ausencia de brote de enfermedad, y que los lechones que nacen infectados son virémicos y excretan virus durante largos periodos de tiempo, la forma más eficiente de hacer vigilancia epidemiológica en granjas infectadas es tomar muestras de lechones neonatos.
Inicialmente se utilizaban muestras de sangre para la determinación del PRRSV. Estas muestras son muy limpias y adecuadas para la detección. Sin embargo, tienen el inconveniente de la dificultad y el tiempo necesario para su obtención.
Además, el número de muestras que se puede obtener es limitado, lo que a su vez limita la sensibilidad de detección, ya que cuando la prevalencia en la población es muy baja es necesario un número muy elevado de muestras para detectar un positivo.
Asimismo, se debe tener en cuenta que la distribución de camadas y lechones positivos en un lote no es homogénea (Almeida et al., 2021a), por lo que es necesario diseñar muestreos dirigidos, seleccionando principalmente lechones retrasados y lechones de cerdas de pocos partos, que generalmente tienen una mayor probabilidad de sufrir infección transplacentaria (Villalta et al., 2018).
Aunque la detección del PRRSV en muestras de suero se considera la técnica de referencia, poco a poco esta muestra ha sido sustituida por otras muestras alternativas, menos invasivas, más fáciles de obtener y que permiten muestrear una población más amplia.
Entre ellas destacan las muestras de fluidos de procesado, fluidos orales o muestras de tejido (generalmente lenguas) de lechones nacidos muertos y bajas en lactación.
Entre ellas destaca el uso de fluidos de procesado, que ha demostrado tener una elevada sensibilidad en granjas en las que se castra quirúrgicamente y permite muestrear a la mayoría de la población ya que se pueden agregar muestras de hasta 30-40 camadas sin perder sensibilidad (Villalba et al., 2018).
Sin embargo, esta muestra no es adecuada en granjas en las que no se castra quirúrgicamente, ya que la sensibilidad de detección en muestras de colas es muy baja.
Más recientemente se ha puesto a punto la detección del PRRSV en muestras de tejidos (i.e. lenguas) de lechones nacidos muertos y de bajas en lactación (Baliellas et al., 2021), que permite agregar un gran número de muestras y tiene una sensibilidad incluso superior a la detección en suero (Baliellas et al., 2021; Machado et al., 2025).
Este hallazgo, que puede parecer sorprendente, no lo es tanto si se tiene en consideración que sólo una proporción, en ocasiones pequeña, de los lechones se infectan in utero (Almeida et al., 2021a).
Además, se ha ensayado la detección del PRRSV en fluidos orales de lechones en lactación, aunque con poco éxito, ya que los lechones son reacios a morder las cuerdas.
Sin embargo, cuando la cuerda se sitúa al alcance de la cerda (fluidos orales familiares) el éxito es mayor (revisado en Almeida et al., 2020), aunque algunas muestras procedentes de camadas con muy pocos lechones positivos pueden resultar negativas (Almeida et al., 2021b).
Finalmente, se debe tener en cuenta que en los programas de vigilancia epidemiológica no es suficiente con seleccionar las muestras que ofrecen mejor sensibilidad.
Para tener éxito es imprescindible la constancia y regularidad en los muestreos, que deben mantenerse en el tiempo, ya que con frecuencia se produce una alternancia entre lotes de partos positivos y negativos durante el proceso de estabilización (Almeida et al., 2021c).
La mala selección de muestras y la falta de constancia son las causas más frecuentes de la clasificación errónea de las granjas, por lo que se debe ser muy cuidadoso en el diseño del programa.
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Autora: Dra. Cinta Prieto Suárez. Profesora Titular en el Departamento de Sanidad Animal, Universidad Complutense de Madrid (España)
El artículo corresponde a las Memorias del porciFORUM México 2025