Nutrición y Alimentación

Optimización de la vitalidad porcina: conexión con la riboflavina (Vitamina B2)

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Las vitaminas B son esenciales para diversos procesos fisiológicos y la riboflavina (vitamina B2) es clave para mantener el equilibrio metabólico, promover el crecimiento y favorecer el bienestar animal(1,2).

Actúa como precursor de coenzimas que impulsan reacciones redox esenciales para la producción de energía, el crecimiento y la regulación inmunitaria(3,4).

Los cerdos tienen elevadas demandas metabólicas debido a su rápido crecimiento y eficiente producción, lo que requiere importantes aportes nutricionales(5,6).

La riboflavina es precursora de dos coenzimas esenciales:

Mononucleótido de flavina (FMN).

Dinucleótido de flavina adenina (FAD).

Estas coenzimas son fundamentales para el transporte mitocondrial de electrones que son vitales para metabolizar carbohidratos, grasas y proteínas, lo que conduce a la producción de trifosfato de adenosina (ATP), el principal vector energético de las células(2,9,10).

Sin suficiente riboflavina, las funciones metabólicas se alteran, lo que provoca retrasos en el crecimiento, problemas reproductivos y una menor eficiencia alimentaria(2,11).

Las plantas son las principales productoras de vitamina B2, por lo tanto, los piensos de origen vegetal son la principal fuente de riboflavina en las dietas porcinas(12,13).

Sin embargo, el contenido de riboflavina puede variar en función de factores como la calidad del suelo, el clima y las prácticas agrícolas(14).

Por lo tanto, es crucial complementar las dietas de los cerdos con suplementos de riboflavina para garantizar que se satisfagan sus necesidades nutricionales y favorezcan un crecimiento óptimo(15).

FUNDAMENTOS BIOQUÍMICOS

La riboflavina tiene una estructura única que incluye un anillo de isoalloxazina y una cadena de ribitol(4), lo que le permite convertirse en FMN y FAD.

El FMN se forma cuando la riboflavina es fosforilada por la riboflavina cinasa utilizando ATP.

El FAD se produce a partir del FMN por la FAD sintetasa.

La riboflavina también contribuye al metabolismo de otras vitaminas:

La conversión de triptófano en niacina y el metabolismo del folato(20,21).

La enzima retinal deshidrogenasa dependiente de FAD convierte el retinal en la forma activa de la vitamina A(22-25).

La riboflavina interviene en la degradación de neurotransmisores como la norepinefrina, la serotonina y la dopamina a través de la enzima monoamino oxidasa(26).

CAPTACIÓN Y DISTRIBUCIÓN DE LA RIBOFLAVINA

Las dietas para cerdos incluyen cereales y harinas proteicas con diferentes niveles de riboflavina(14,15)(Tabla 1). Debido a las variaciones naturales, la baja biodisponibilidad y la degradación de estos ingredientes, es necesario suplementar con riboflavina producida por fermentación a través de premezclas para satisfacer los requerimientos en la nutrición porcina(14,27).

Una vez ingeridas, las coenzimas FAD y FMN se liberan en el estómago y se descomponen en riboflavina en el intestino(28).

La riboflavina producida industrialmente, al estar en una forma no esterificada, puede absorberse directamente sin necesidad de un paso de hidrólisis, a diferencia de la mayoría de la vitamina B2 nativa de origen vegetal(10).
Una vez que entra en la sangre portal, es transportada al hígado para su posterior redistribución a otros órganos según sea necesario; el exceso se elimina en la orina(30,31).

NECESIDADES DE RIBOFLAVINA

Investigaciones centrándose en los niveles óptimos para cada fase de producción porcina han mejorado nuestra comprensión sobre las necesidades vitamínicas de los cerdos.

Los estudios demuestran que niveles de riboflavina superiores a las recomendaciones de la NASEM mejoran el rendimiento y la calidad de la canal(32-34,36,37), lo que justifica hacer una reevaluación sobre estas necesidades.

Las recomendaciones de las empresas de genética, que incluyen márgenes de seguridad, orientan las estrategias prácticas(15) (Tabla 2).

Cabe mencionar que la suplementación con riboflavina sólo aumenta los costes de alimentación en un 0,03%, pero mejora significativamente la productividad(15).

Estudios con riboflavina no muestran efectos adversos incluso a dosis elevadas, lo que confirma su seguridad, especialmente cuando se usa a niveles recomendados(38,39).

CONSECUENCIAS DEL DÉFICIT DE RIBOFLAVINA (ARIBOFLAVINOSIS)

EFECTOS DE LA SUPLEMENTACIÓN CON RIBOFLAVINA

La riboflavina es crucial para el sistema glutatión peroxidasa (GSH-Px), que protege los tejidos en contra del estrés oxidativo(51).

Parsons et al.(52) observaron que la suplementación con riboflavina mejora el crecimiento, la actividad antioxidante en riñones y músculos y la retención de selenio, aunque no afectaba la actividad del GSH-Px en corazón o cerebro.

Brady et al.(51) demostraron que la deficiencia de riboflavina en lechones reducía la actividad de las enzimas antioxidantes y los niveles de selenio.

Lutz y Stahly(3) reportaron que la riboflavina mejoraba la eficiencia alimentaria y el crecimiento de los cerdos, y que las razas magras requerían niveles superiores a los estimados.

Mitchel et al.(43) mostraron que las temperaturas frías casi triplicaban las necesidades de riboflavina, mientras que su deficiencia aumentaba los niveles de neutrófilos, lo que sugería estrés inmunitario.

Torreggiani et al.(2) demostraron que la suplementación con riboflavina resolvía los problemas reproductivos de las cerdas deficientes.

La Tabla 3 resume los efectos de la suplementación con riboflavina en cerdos.

BASF es líder mundial en la producción de vitamina B2 fermentada a partir del hongo Ashbya gossypii

En el proceso de fermentación, Ashbya gossypii produce riboflavina de gran pureza y estabilidad.

La vitamina B2 de BASF cumple con las normas de seguridad y los requisitos reglamentarios más estrictos, ya que está aprobada en la UE y cuenta con la certificación FAMI-QS.

Es conocida por su calidad consistente, su excelente fluidez y su comportamiento al mezclarse, lo que la hace ideal para su uso en dosificadores automáticos.

La riboflavina desempeña un papel crucial en la nutrición y el bienestar de los cerdos, actuando como coenzima en las reacciones metabólicas, especialmente en la producción de energía, y como antioxidante.

La vitamina B2 contribuye a mejorar la utilización de los nutrientes y a promover la actividad enzimática, favoreciendo en conjunto el crecimiento y el rendimiento óptimos de los cerdos.

El impacto de la riboflavina en los parámetros reproductivos es significativo, ya que influye en el éxito reproductivo de las especies porcinas y tiene implicaciones de gran alcance para la viabilidad económica y las consideraciones de bienestar animal.

Recomendaciones

Optimizar el valor nutritivo de los piensos para cerdos añadiendo suplementos de riboflavina.

Formular dietas para cerdos que satisfagan las necesidades de riboflavina para un crecimiento óptimo, reproducción y bienestar, tomando como referencia las recomendaciones de las empresas de cría.

Considerar la posibilidad de aumentar las dosis de vitamina B2 durante periodos de estrés o cuando hay riesgo de enfermedad.

Este artículo se basa en la publicación: Shastak, Y., & Pelletier, W. (2024). Exploring the role of riboflavin in swine well-being: A literature review. Porcine Health Management, 10, 46. https://doi. org/10.1186/s40813-024-00399-1

BIBLIOGRAFÍA

1. Qin Y., Zhou J., Xiong X., Huang J., Li J., Wang Q., Yang H., and Y. Yin. Effect of riboflavinon intestinal development and intestinal epithelial cell function of weaned piglets. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2023;107(2):518–28.
2. Torreggiani C., Maes D., Franchi L., Raffi V., Borri E., Prosperi A., Chiapponi C., and A. Luppi. Premature farrowing and stillbirths in two organic sow farms due toriboflavin deficiency. Porcine Health Manag. 2023;9(1):12.
3. Lutz T.R., and T.S. Stahly. Dietary riboflavin needs for body maintenance and body protein and fat accretion in pigs. Iowa State University Animal Industry Report 1(1), 1999.
4. Suwannasom N., Kao I., Pruß A., Georgieva R., and H. Bäumler. Riboflavin: the health benefits of a forgotten natural vitamin Int. J. Mol. Sci. 2020;21(3):950.
5. Shastak Y., and W. Pelletier. Vitamin a supply in swine production: a review of current science and practical considerations. Appl. Anim. Sci. 2023;39(5):289–305.
6. van Kempen T.A.T.G., and R.T. Zijlstra. Eat like a pig to combat obesity. Metabolites 2023;13(3):420.
7. Giguère G., and M. Matte. Erythrocyte glutathione reductase activity and riboflavin nutritional status in early-weaned piglets. Int. J. Vitam. Nutr. Res. 2002;72(6):383–7.
8. Abbas C.A., and A.A. Sibirny. Genetic control of biosynthesis and transport of riboflavin and flavin nucleotides and construction of robust biotechnological producers. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2011;75(2):321–60.
9. Udhayabanu T., Manole A., Rajeshwari M., Varalakshmi P., Houlden H., and B. Ashokkumar. Riboflavin responsive mitochondrial dysfunction in neurodegenerative diseases. J. Clin. Med. 2017;6(5):52.
10. Shastak Y., and W. Pelletier. From metabolism to vitality: uncovering riboflavin’s importance in poultry nutrition. Animals. 2023b;13(22):3554.
11. Patek A.J., Post J., and J. Victor. Riboflavin deficiency in the pig. Am. J. Physiol 1941;133(1):47–55.
12. Supplee G.C., Jensen O.G., Bender R.C., and O.J. Kahlenberg. Factors affecting the riboflavin content of the liver. J. Biol. Chem. 1942;144(1):79–85.
13. Fischer M., and A. Bacher. Biosynthesis of vitamin B2 in plants. Physiol. Plant. 2006;126:304–18.
14. Witten S. Characterization of organic cereals and grain legumes as feedstuffs for monogastric animals: Effects of variety and environmental conditions on the contents of crude nutrients, amino acids, thiamine, riboflavin, and in vitro digestibility of crude protein and amino acids. PhD Thesis, Georg-August-Universität Göttingen, Germany, 2018.
15. Shastak Y., and W. Pelletier. Exploring the role of riboflavin in swine well-being: A literature review. Porcine Health Manag. 2024;10:46.
16. Leone P., Galluccio M., Brizio C., Barbiroli A., Iametti S., Indiveri C., and M. Barile. The hidden side of the human FAD synthase 2. Int. J. Biol. Macromol. 2019;138:986–95.
17. Rivero M., Boneta S., Novo N., Velázquez-Campoy A., Polo V., and M. Medina. Riboflavin kinase and pyridoxine 5’-phosphate oxidase complex formation envisages transient interactions for FMN cofactor delivery. Front. Mol. Biosci. 2023;10:1167348.
18. Balasubramaniam S., and J. Yaplito-Lee. Riboflavin metabolism: role in mitochondrial function. J. Translat. Genet. Genom. 2020;4(4):285–306.
19. Curtabbi A., and J.A. Enríquez. The ins and outs of the flavin mononucleotide cofactor of respiratory complex I. IUBMB Life. 2022;74:629–44.
20. Kohlmeier M. Chapter 10 – Water-soluble vitamins and non-nutrients. In: M. Kohlmeier, Nutrient Metabolism (Second Edition), Academic Press. 2015; 567–671.
21. McCormick D.B. Two interconnected B vitamins: Riboflavin and pyridoxine. Physiol Rev. 1989;69:1170–98.
22. Mic F.A., Molotkov A., Fan X., Cuenca A.E., and G. Duester. RALDH3, a retinaldehy de dehydrogenase that generates retinoic acid, is expressed in the ventral retina, otic vesicle and olfactory pit during mouse development. Mech. Dev. 2000;97(1– 2):227–30.
23. Napoli J.L. Post-natal all-trans-retinoic acid biosynthesis. Methods Enzymol. 2020;637:27–54.
24. Shastak Y., Gordillo A., and W. Pelletier. The relationship between vitamin A status and oxidative stress in animal production. J. Appl. Anim. Res. 2023;51(1):546–53.
25. Shastak Y., and W. Pelletier. The role of vitamin A in non-ruminant immunology. Front. Anim. Sci. 2023d;4:1197802.
26. Wan L., Li Y., Zhang Z.Z., Sun Y., and R. Li. Methylenetetrahydrofolate reductase and psychiatric diseases. Transl. Psychiatry. 2018;8:242.
27. Dove R., and D.A. Cook. Water-soluble vitamins in swine nutrition. In: Lewis A.J., Southern L.L. Swine Nutrition. New York, NY, USA: CRC. 2000; 315–56.
28. NAS (National Academy of Sciences). Dietary reference intakes for thiamin, riboflavin, niacin, vitamin B6, folate, vitamin B12, pantothenic acid, biotin, and choline. Institute of Medicine (US). Standing Committee on the Scientific Evaluation of Dietary Reference Intakes and its panel on Vitamins, and Choline. Washington (DC): National Academies Press (US); 1998.
29. Peechakara B.V., Sina R.E., and M. Gupta. Vitamin B2 (riboflavin). Treasure Island (FL):StatPearls Publishing, 2024.
30. Barile M., Giancaspero T.A., Leone P., Galluccio M., and C. Indiveri Riboflavin transport and metabolism in humans. J. Inherit. Metab. Dis. 2016;39(4):545–57.
31. McCormick, D.B. Riboflavin. In: Wexler P. Encyclopedia of Toxicology (Third Edition), Academic Press. 2014;128-129.
32. Cho J.H., Lu N., and M.D. Lindemann. Effects of vitamin supplementation on growth performance and carcass characteristics in pigs. Livest. Sci. 2017;204:25–32.
33. Santos R.K., Novais A., Borges D., Alves J., Dario J., Frederico G., Pierozan C.R., Batista J.P., Pereira M. Jr, and C. Silva. Increased vitamin supplement to sows, piglets and finishers and the effect in productivity. Animal. 2020;4:86–94.
34. Yang P., Zhao J., Wang H., Li L., and Y. Ma. Effects of vitamin forms and levels on vitamin bioavailability and growth performance in piglets. Appl Sci.2020;10:4903.
35. NASEM (National Academies of Sciences, Engineering, and Medicine). Nutrient Requirements of Swine. 12th rev. ed. National Academy Press, 2012.
36. Hinson R.B., McCormick K.A., Moser R.L., Ackerman M.A., Main R.G., and J.A. Mahoney. Reduced vitamin supplementation with fat-soluble vitamins A, D, and E added at National Research Council requirements may not be adequate for optimal sow and progeny performance. J. Swine Health Prod. 2022;30:79–94.
37. Dalólio F.S., Oliveira J.P., Rostagno H.S., Albino L.F.T., Silva C.C., and C. Lozano. Effect of increasing levels of fat-soluble and water- soluble vitamins on improving performance and plasma vitamin concentration in modern hybrids pig’s growth and finishing phase. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2023;75(2):303–12.
38. EFSA FEEDAP Panel (EFSA Panel on Additives and Products or Substances used in Animal Feed). 2014. Scientific Opinion on the safety and efficacy of vitamin B2 (80%) as riboflavin produced by Bacillus subtilis for all animal species, based on a dossier submitted by VITAC EEIG. EFSA J. 2014;12(1):3531.
39. EFSA FEEDAP Panel (EFSA Panel on Additives and Products or Substances used in Animal Feed), Rychen G, Aquilina G, Azimonti G, Bampidis V, Bastos ML, Bories G, Chesson A, Cocconcelli PS, Flachowsky G, Gropp J, Kolar B, Kouba M, López-Alonso M, López Puente S, Mantovani A, Mayo B, Ramos F, Saarela M, Villa RE, Wester P, Costa L, Dierick N, Glandorf B, Herman L, Kärenlampi S, Leng L, Tebbe C, Aguilera J, Manini P, Tarrés-Call J, Wallace RJ. 2018. Scientific Opinion on the safety and efficacy of vitamin B2 (riboflavin) produced by Ashbya gossypii DSM 23096 for all animal species based on a dossier submitted by BASF SE. EFSA J. 2018;16(7):5337.
40. Krider J.L., Terrill S.W., and R.F. VanPoucke. Response of weanling pigs to various levels of riboflavin. J. Anim. Sci. 1949;8:121–5.
41. Lehrer W.P., and A.C. Wiese. Riboflavin deficiency in baby pigs. J. Anim. Sci. 1952;11(2):244–50.
42. Hughes E.H. The minimum requirement of riboflavin for the growing pig: two figures. J. Nutr. 1940;20(3):233–8.
43. Mitchell H.H., Johnson B.C., Hamilton T.S., and W.T. Haines. The riboflavin requirement of the growing pig at two environmental temperatures. J. Nutr. 1950;41:317–37.
44. Miller C.O., Ellis N.R., Stevenson J.W., and R.W. Davey. The riboflavin requirement of swine for reproduction. J. Nutr. 1953;51:163.
45. Frank G.R., Bahr J.M., and R.A. Easter. Riboflavin requirement of lactating swine. J. Anim. Sci. 1988;66(1):47–52.
46. NASEM (National Academies of Sciences, Engineering, and Medicine). Nutrient Requirements of Swine. 11th rev. ed. National Academy Press,1998.
47. Ensminger ME, Bowland JP, Cunha TJ. Observations on the thiamine, riboflavin, and choline needs of sows for reproduction. J. Anim. Sci. 1947;6(4):409–23.
48. Manole A., Jaunmuktane Z., Hargreaves I., Ludtmann M.H.R., Salpietro V., Bello O.D., et al. Clinical, pathological and functional characterization of riboflavin responsive neuropathy. Brain. 2017;140(11):2820–37.
49. Anonymous. Riboflavin deficiency in swine. Nutr. Rev. 1945;3(5):141–2.
50. Ellis N.R. Riboflavin in swine nutrition. Nutr. Rev. 1955;13(11):330–1.
51. Brady P.S., Brady L.J., Parsons M.J., Ullreyand D.E., Miller E.R. Effects of riboflavin deficiency on growth and giutathione peroxidase system enzymes in the baby pig. J. Nutr. 1979;109:1615.
52. Parsons M.J., Ku P.K., Ullrey D.E., Stowe H.D., Whetter P.A., and E.R. Miller. Effects of Riboflavin supplementation and selenium source on selenium metabolism in the young pig. J. Anim. Sci. 1985;60(2):451–61.
53. Miller C.O., and N.R. Ellis. The riboflavin requirements of growing swine. J. Anim. Sci.1951;10(4):807–12.
54. Pettigrew J.E., El-Kandelgy S.M., Johnston L.J., and G.C. Shurson. Riboflavin nutrition of sows. J. Anim. Sci. 1996;74(9):2226–30.
55. Bazer F.W. Use of supplemental dietary riboflavin to increase fertility and/or prolificacy in animals. US patent US5063226A. IFI CLAIMS Patent Services;1990.

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