La Peste Porcina Africana (PPA) es la enfermedad más importante que amenaza al ganado porcino a nivel mundial y su introducción en países anteriormente negativos ha aumentado el riesgo de propagación de la enfermedad. Sin una vacuna o tratamiento eficaz, el objetivo principal de los países negativos es prevenir la transmisión del virus a los cerdos. |
En todo el mundo se comercializan cantidades importantes de ingredientes de piensos utilizados en las dietas porcinas, pudiendo importarse desde países con la enfermedad.
PPA – LA MAYOR AMENAZA PARA EL SECTOR PORCINO
El virus de la Peste Porcina Africana (VPPA) es posiblemente la amenaza más importante para la producción mundial de carne de cerdo debido a:
El VPPA es un virus de ADN de doble cadena envuelto perteneciente a la familia Asfarviridae³. Se trata de un virus complejo y único, que sólo infecta a los cerdos y que plantea varios retos distintos para el control de la enfermedad.
El VPPA es altamente patógeno, causando hemorragias generalizadas y tasas de mortalidad cercanas al 100% en los cerdos infectados⁶. Las vías de transmisión del VPPA son diversas (Figura 1):
El VPPA es [registrados]estable en el medio ambiente debido a su resistencia al pH y a las temperaturas extremas en comparación con otros virus porcinos10, sobrevive durante meses en productos contaminados derivados del cerdo y tiene el potencial de volverse endémico en los cerdos salvajes11.
Al no disponer de una vacuna comercial para prevenir la infección12 ni de un tratamiento para reducir la gravedad de la enfermedad en los cerdos infectados, el objetivo primordial de los países negativos es prevenir la introducción del virus de la Peste Porcina Africana a través medidas de bioseguridad con respecto a las personas, los cerdos, los piensos y los suministros que entran en las explotaciones.
EL PIENSO COMO VECTOR DE TRANSMISIÓN
Tras la contaminación en cualquiera de estos puntos de control, los ingredientes de los piensos procedentes de países positivos a la PPA se podrían enviar por vía transoceánica a través del Atlántico o del Pacífico en grandes contenedores.
Históricamente, la introducción y propagación del VPPA en nuevos países o regiones se ha asociado epidemiológicamente con piensos contaminados en ausencia de residuos alimenticios infecciosos que contengan carne de cerdo:
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¿QUÉ INGREDIENTES FAVORECEN LA ESTABILIDAD DEL VPPA?
Los ingredientes incluían harina de soja convencional, harina de soja ecológica, torta de soja, granos secos de destilería con solubles (DDGS), lisina, colina, vitamina D, alimento húmedo para gatos, alimento húmedo para perros, alimento seco para perros, tripas de salchichas de cerdo y pienso completo. Tras la inoculación del VPPA (Georgia 2007), los ingredientes se expusieron a temperaturas y humedad fluctuantes que reproducían las condiciones meteorológicas reales del transporte transoceánico. Se analizaron los ingredientes para detectar la presencia del virus infeccioso al finalizar el simulacro de envío. Al cabo de 30 días de envío transatlántico, el virus se mantuvo estable en diversos ingredientes, detectándose el virus infeccioso en el 75% de los ingredientes analizados, incluyendo la harina de soja convencional, la harina de soja ecológica, la torta de soja, la colina, el alimento húmedo para gatos, el alimento húmedo para perros, el alimento seco para perros, las tripas de salchicha de cerdo y los piensos completos. |
La vida media del VPPA en los ingredientes de los piensos proporciona pruebas adicionales sobre la estabilidad relativa del virus en diferentes matrices.
La vida media del VPPA (Georgia 2007) se determinó en nueve piensos e ingredientes de piensos que favorecen la estabilidad del virus en condiciones de transporte transoceánico20, obteniéndose unos tiempos que oscilan entre 9,6±0,4 días y 14,2±0,8 días, con una vida media promedio de 12,2 días.
TRANSMISIÓN DE LA PPA A TRAVÉS DE PIENSO O AGUA
La transmisibilidad del VPPA por vía oral se conoce desde hace un siglo y se determinó desde el principio que tenía más variabilidad que las vías parenterales de inoculación21.
Sin embargo, la transmisibilidad de la cepa moderna del VPPA (Georgia 2007) a través de la ingestión de líquidos y piensos de origen vegetal contaminados sólo se ha caracterizado recientemente22.
La modelización estadística de la exposición repetida a pequeños volúmenes a lo largo del tiempo (es decir, consumir un lote de pienso contaminado o beber agua contaminada) reveló un aumento de la probabilidad de infección a medida que aumenta el número de exposiciones o el volumen total de consumo.
REDUCCIÓN DEL RIESGO DE PROPAGACIÓN DE LA PPA A TRAVÉS DE LA BIOSEGURIDAD ENFOCADA A LOS PIENSOS
Como área de especialización relativamente nueva en el ámbito de la bioseguridad, la bioseguridad de los piensos se ha convertido en un objetivo importante y ampliamente reconocido como crítico para la prevención de la introducción de enfermedades víricas porcinas a las explotaciones.
La evaluación del riesgo comienza con la caracterización de la necesidad, la fuente y los datos de estabilidad del virus de cada ingrediente del pienso (Figura 2):
1. Debe confirmarse que la inclusión del ingrediente es necesario para la salud y el crecimiento de los cerdos, no debiendo existir una alternativa adecuada, rentable y de menor riesgo.
2. Debe tenerse en cuenta la situación sanitaria del país de origen de cada ingrediente, incluidos los brotes de enfermedades porcinas en regiones específicas o las enfermedades endémicas de amplia prevalencia.
3. La estabilidad ambiental del virus en el ingrediente del pienso juega un papel en el riesgo. Específicamente, la investigación experimental ha identificado ingredientes de alto riesgo, como la harina de soja convencional, que proporcionan matrices ambientales propicias24.
4. Las prácticas agrícolas o de fabricación utilizadas para producir el ingrediente influyen en el nivel de riesgo. Por ejemplo:
La bioseguridad de los piensos, los ingredientes y las fábricas de piensos es esencial para reducir los riesgos de enfermedades infecciosas en todas las etapas de la producción porcina26,27 y la implementación de protocolos de bioseguridad centrados en los piensos puede ayudar a abordar estos riesgos.
Esta recomendación está respaldada por los estudios epidemiológicos que relacionan la hierba fresca y las semillas contaminadas por las secreciones de jabalíes infectados con el acceso a los campos29. |
Recientemente, la Agencia Canadiense de Inspección Alimentaria (CFIA) estableció una serie de criterios de evaluación de riesgos para las fábricas de piensos y publicó 34 factores de riesgo identificados como importantes para su seguridad. Entre los factores identificados estaban30:
Muchos de los protocolos de bioseguridad actuales aplicados en las explotaciones porcinas pueden trasladarse directamente al entorno de las fábricas de piensos. Los protocolos pueden incluir normas sobre:
Además de la bioseguridad y de las consideraciones relativas a su procedencia, los tratamientos físicos y químicos de los piensos o de los ingredientes pueden ser herramientas para minimizar el riesgo de introducción del VPPA.
ALMACENAMIENTO
Establecer un periodo de cuarentena para los piensos o almacenar los ingredientes tras su importación de países y regiones de alto riesgo es una estrategia encaminada a favorecer la inactivación del virus antes de incorporar los ingredientes a las dietas de los cerdos.
En la UE, donde el VPPA está presente en los jabalíes y se ha reportado la contaminación de los cultivos de campo, se recomienda el almacenamiento de hierba fresca y granos durante 30 días antes de su uso y el almacenamiento de paja durante 90 días antes del uso como cama o material de enriquecimiento. Estas recomendaciones tienen como objetivo reducir el riesgo de que los cultivos de campo sean una fuente de PPA.
Tras 2 horas de almacenamiento a temperatura ambiente, no se pudo aislar ningún virus infeccioso de los cultivos no procesados31. Los resultados indicaron que el VPPA infeccioso era indetectable en el pienso inoculado tras 5 días a 22-25˚C y tras 40 días a 4-6 6˚C. A temperaturas entre -16˚C y -20˚C, el VPPA infeccioso era detectable en el pienso compuesto de origen vegetal a lo largo de todo el estudio de 60 días32. |
Los aditivos para piensos con actividad antimicrobiana frente al VPPA y otros virus porcinos han cobrado un gran interés a raíz de la concienciación sobre el riesgo de los piensos y la necesidad de contar con alternativas a los antibióticos33.
Desde el punto de vista mecanístico, estos productos antimicrobianos inactivan los virus de diferentes maneras y la normativa sobre su uso varía según el país.
En conjunto, tanto los tratamientos físicos como los químicos brindan la oportunidad de reducir el riesgo de la presencia de virus en los piensos.
La propagación geográfica del VPPA supone un importante riesgo de introducción en España, con las enormes pérdidas económicas que ello supondría para el sector, tanto por las pérdidas de producción como por la paralización del mercado. |
Artículo traducido y adaptado de “Niederwerder, M.C. Risk and Mitigation of African Swine Fever Virus in Feed. Animals 2021, 11, 792. https://doi.org/10.3390/ani11030792” (CC BY 4.0).
BIBLIOGRAFIA:
1. Woonwong, Y.; Do Tien, D.; Thanawongnuwech, R. The Future of the Pig Industry After the Introduction of African Swine Fever into Asia. Anim. Front. 2020, 10, 30–37. [CrossRef]
2. Sang, H.; Miller, G.; Lokhandwala, S.; Sangewar, N.; Waghela, S.D.; Bishop, R.P.; Mwangi, W. Progress toward Development of Effective and Safe African Swine Fever Virus Vaccines. Front. Vet. Sci. 2020, 7, 84. [CrossRef]
3. Alonso, C.; Borca, M.; Dixon, L.; Revilla, Y.; Rodriguez, F.; Escribano, J.M.; Ictv Report, C. ICTV Virus Taxonomy Profile: Asfarviridae. J. Gen. Virol. 2018, 99, 613–614. [CrossRef]
4. Ghedin, E.; Sengamalay, N.A.; Shumway, M.; Zaborsky, J.; Feldblyum, T.; Subbu, V.; Spiro, D.J.; Sitz, J.; Koo, H.; Bolotov, P.; et al. Large-scale sequencing of human influenza reveals the dynamic nature of viral genome evolution. Nature 2005, 437, 1162–1166. [CrossRef]
5. Galindo, I.; Alonso, C. African Swine Fever Virus: A Review. Viruses 2017, 9, 103. [CrossRef]
6. Blome, S.; Gabriel, C.; Beer, M. Pathogenesis of African swine fever in domestic pigs and European wild boar. Virus Res. 2013, 173, 122–130. [CrossRef]
7. Olesen, A.S.; Lohse, L.; Boklund, A.; Halasa, T.; Gallardo, C.; Pejsak, Z.; Belsham, G.J.; Rasmussen, T.B.; Bøtner, A. Transmission of African swine fever virus from infected pigs by direct contact and aerosol routes. Vet. Microbiol. 2017, 211, 92–102. [CrossRef]
8. Olesen, A.S.; Belsham, G.J.; Bruun Rasmussen, T.; Lohse, L.; Bødker, R.; Halasa, T.; Boklund, A.; Bøtner, A. Potential routes for indirect transmission of African swine fever virus into domestic pig herds. Transbound. Emerg. Dis. 2020, 67, 1472–1484. [CrossRef]
9. Burrage, T.G. African swine fever virus infection in Ornithodoros ticks. Virus Res. 2013, 173, 131–139. [CrossRef [PubMed]
10. Niederwerder, M.C.; Rowland, R.R. Is There a Risk for Introducing Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus (PRRSV) through the Legal Importation of Pork? Food Environ. Virol. 2017, 9, 1–13. [CrossRef]
11. McVicar, J.W.; Mebus, C.A.; Becker, H.N.; Belden, R.C.; Gibbs, E.P.J. Induced African swine fever in feral pigs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1981, 179, 441–446.
12. Rock, D.L. Challenges for African swine fever vaccine development-“ . . . perhaps the end of the beginning”. Vet. Microbiol. 2017, 206, 52–58. [CrossRef]
13. Boklund, A.; Dhollander, S.; Chesnoiu Vasile, T.; Abrahantes, J.C.; Bøtner, A.; Gogin, A.; Gonzalez Villeta, L.C.; Gortázar, C.; More, S.J.; Papanikolaou, A.; et al. Risk factors for African swine fever incursion in Romanian domestic farms during 2019. Sci. Rep. 2020, 10, 10215. [CrossRef]
14. Olsevskis, E.; Guberti, V.; Serzants, M.; Westergaard, J.; Gallardo, C.; Rodze, I.; Depner, K. African swine fever virus introduction into the EU in 2014: Experience of Latvia. Res. Vet. Sci. 2016, 105, 28–30. [CrossRef] [PubMed]
15. Nurmoja, I.; Mõtus, K.; Kristian, M.; Niine, T.; Schulz, K.; Depner, K.; Viltrop, A. Epidemiological analysis of the 2015–2017 African swine fever outbreaks in Estonia. Prev. Vet. Med. 2020, 181, 104556. [CrossRef] [PubMed]
16. Wen, X.; He, X.; Zhang, X.; Zhang, X.; Liu, L.; Guan, Y.; Zhang, Y.; Bu, Z. Genome sequences derived from pig and dried blood pig feed samples provide important insights into the transmission of African swine fever virus in China in 2018. Emerg. Microbes Infect. 2019, 8, 303–306. [CrossRef] [PubMed]
17. Zhai, S.L.; Wei, W.K.; Sun, M.F.; Lv, D.H.; Xu, Z.H. African swine fever spread in China. Vet. Rec. 2019, 184, 559. [CrossRef] [PubMed]
18. Dee, S.A.; Bauermann, F.V.; Niederwerder, M.C.; Singrey, A.; Clement, T.; de Lima, M.; Long, C.; Patterson, G.; Sheahan, M.A.; Stoian, A.M.M.; et al. Survival of viral pathogens in animal feed ingredients under transboundary shipping models. PLoS ONE 2018, 13, e0194509. [CrossRef] [PubMed]
19. Bryan, M.; Zimmerman, J.J.; Berry, W.J. The use of half-lives and associated confidence intervals in biological research. Vet. Res Commun. 1990, 14, 235–240. [CrossRef]
20. Stoian, A.M.M.; Zimmerman, J.; Ji, J.; Hefley, T.J.; Dee, S.; Diel, D.G.; Rowland, R.R.R.; Niederwerder, M.C. Half-Life of African Swine Fever Virus in Shipped Feed. Emerg. Infect. Dis. 2019, 25, 2261–2263. [CrossRef]
21. Eustace Montgomery, R. On a Form of Swine Fever Occurring in British East Africa (Kenya Colony). J. Comp. Pathol. Ther. 1921, 34, 159–191. [CrossRef]
22. Niederwerder, M.C.; Stoian, A.M.M.; Rowland, R.R.R.; Dritz, S.S.; Petrovan, V.; Constance, L.A.; Gebhardt, J.T.; Olcha, M.; Jones, C.K.; Woodworth, J.C.; et al. Infectious Dose of African Swine Fever Virus When Consumed Naturally in Liquid or Feed. Emerg. Infect. Dis. 2019, 25, 891–897. [CrossRef]
23. Patterson, G.; Niederwerder, M.C.; Dee, S.A. Risks to animal health associated with imported feed ingredients. J. Am. Vet. Med. Assoc. 2019, 254, 790–791. [CrossRef]
24. Stoian, A.M.M.; Petrovan, V.; Constance, L.A.; Olcha, M.; Dee, S.; Diel, D.G.; Sheahan, M.A.; Rowland, R.R.R.; Patterson, G.; Niederwerder, M.C. Stability of classical swine fever virus and pseudorabies virus in animal feed ingredients exposed to transpacific shipping conditions. Transbound. Emerg. Dis. 2020, 67, 1623–1632. [CrossRef]
25. SHIC. Feed Ingredient Safety Decision Tree Matrix; Swine Health Information Center: Ames, IA, USA, 2018; Available online: https://www.swinehealth.org/wp-content/uploads/2018/09/Feed-Ingredient-Safety.pdf (accessed on 9 December 2020).
26. Reicks, D.L. Effective biosecurity to protect North American studs and clients from emerging infectious disease. Theriogenolog 2019, 137, 82–87. [CrossRef]
27. Stewart, S.C.; Dritz, S.S.;Woodworth, J.C.; Paulk, C.; Jones, C.K. A review of strategies to impact swine feed biosecurity. Anim Health Res. Rev. 2020, 21, 61–68. [CrossRef]
28. Bellini, S.; Rutili, D.; Guberti, V. Preventive measures aimed at minimizing the risk of African swine fever virus spread in pig farming systems. Acta Vet. Scand. 2016, 58, 82. [CrossRef]
29. Guinat, C.; Gogin, A.; Blome, S.; Keil, G.; Pollin, R.; Pfeiffer, D.U.; Dixon, L. Transmission routes of African swine fever virus to domestic pigs: Current knowledge and future research directions. Vet. Rec. 2016, 178, 262–267. [CrossRef] [PubMed]
30. Rhouma, M.; Lachapelle, V.; Comeau, G.; Quessy, S.; Zanabria, R.; Provost, F.; Italiano, C.; Holley, R.; Smillie, J.; Brockhoff, E.; et al. Identification and selection of animal health and food safety-related risk factors to be included in the Canadian Food Inspection Agency’s risk assessment model for livestock feed mills. Food Control 2021, 121 [CrossRef]
31. Fischer, M.; Mohnke, M.; Probst, C.; Pikalo, J.; Conraths, F.J.; Beer, M.; Blome, S. Stability of African swine fever virus on heattreated field crops. Transbound. Emerg. Dis. 2020, 67, 2318–2323. [CrossRef]
32. Sindryakova, I.P.; Morgunov, Y.P.; Chichikin, A.Y.; Gazaev, I.K.; Kudryashov, D.A.; Tsybanov, S.Z. The Influence of Temperature on the Russian Isolate of African Swine Fever Virus in Pork Products and Feed with Extrapolation to Natural Conditions. Sel’skokhozyaistvennaya Biol. 2016, 51, 467–474. [CrossRef]
33. Jackman, J.A.; Boyd, R.D.; Elrod, C.C. Medium-chain fatty acids and monoglycerides as feed additives for pig production: Towards gut health improvement and feed pathogen mitigation. J. Anim. Sci. Biotechnol. 2020, 11, 44 [CrossRef] [PubMed]
34. Thormar, H.; Isaacs, C.E.; Brown, H.R.; Barshatzky, M.R.; Pessolano, T. Inactivation of enveloped viruses and killing of cells by fatty acids and monoglycerides. Antimicrob. Agents Chemother. 1987, 31, 27. [CrossRef]
35. Sabbaghi, A.; Miri, S.M.; Keshavarz, M.; Zargar, M.; Ghaemi, A. Inactivation methods for whole influenza vaccine production. Rev. Med. Virol. 2019, 29, e2074. [CrossRef]
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