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Utilidad de los análisis hematológicos y bioquímicos sanguíneos en porcino

Escrito por: Beatriz González - Exopol S.L. y Dpto. Patología Animal. Facultad de Veterinaria, Universidad de Zaragoza , Gema Chacón -

Veterinaria Responsable del Dpto. Diagnóstico en EXOPOL

, María Victoria Falceto - Servicio de Asesoría y Diagnostico Reproductivo Porcino (SARPORC) Departamento de Patología Animal de la Facultad de Veterinaria de la Universidad de Zaragoza Instituto Agroalimentario de Aragón-IA2 (Universidad de Zaragoza-CITA) , Marta Ferrer - Exopol S.L. , Olga Mitjana - Servicio de Asesoría y Diagnostico Reproductivo Porcino (SARPORC) Departamento de Patología Animal de la Facultad de Veterinaria de la Universidad de Zaragoza Instituto Agroalimentario de Aragón-IA2 (Universidad de Zaragoza-CITA)

Los análisis hematológicos y bioquímicos son una herramienta de gran utilidad clínica para detectar alteraciones del organismo de forma rápida y sencilla, gracias a la gran cantidad de parámetros que se pueden valorar a partir de una muestra de sangre.

La biopatología clínica es una herramienta de diagnóstico en el animal vivo con diferentes aplicaciones en producción animal:

Existen muchos factores que influyen en los valores obtenidos:

La edad (lechones lactantes o en transición, cerdos en fase de cebo, animales jóvenes vs. adultos, etc.)
La genética
La alimentación
La fase productiva (cerdas nulíparas, en gestación, en lactación)

Es importante conocer los valores de referencia de la población a estudiar y así poder relacionarlos con su óptima productividad y monitorizar los cambios que se introduzcan en la explotación, aunque no vayan acompañados de una sintomatología específica.

La hematología consiste en el estudio de las células sanguíneas y de los factores de coagulación y pone de manifiesto enfermedades subyacentes como[registrados] anemia, inflamación o infección.

Las células sanguíneas se clasifican en tres series:

SERIE ROJA

Un descenso del número de glóbulos rojos, del hematocrito y de la hemoglobina confirman un diagnóstico de anemia y, clasificando el tipo de anemia, podemos acotar su causa etiológica.

Por ejemplo, la presencia de anisocitosis, policromasia, esquistocitos y glóbulos rojos nucleados son indicativas de anemia regenerativa de origen hemolítico, siendo Mycoplasma suis la causa más frecuente de anemia hemolítica en lechones.

SERIE BLANCA

Los leucocitos son las células del sistema inmunitario, diferenciándose en:

Cada tipo celular tiene una función determinada, por lo que su aumento o disminución da una información muy valiosa acerca del proceso implicado, su etiología, duración y pronóstico.

 

Los neutrófilos y linfocitos son los leucocitos mayoritarios.

Los neutrófilos aumentan, principalmente, en caso de infecciones bacterianas severas y de inflamación.

Los neutrófilos inmaduros, llamados en banda o cayado (neutrofilia con desviación a la izquierda) indican un proceso agudo.

Los neutrófilos maduros (desviación a la derecha) sugieren procesos más crónicos.

La neutropenia aparece asociada a infección sistémica grave, septicemia, endotoxemia, infección vírica, animales malnutridos, etc.

Los linfocitos aumentan principalmente en infecciones virales y en procesos infecciosos crónicos.

La disminución de linfocitos se produce fundamentalmente en casos de infecciones virales agudas.

La linfopenia unida a neutropenia puede estar causada por algunas enfermedades agudas, como la Peste Porcina Clásica o la Leptospirosis.

 

Se observan valores elevados de monocitos en caso de inflamación supurativa, infecciones (endocarditis, piómetra, abscesos, peritonitis, etc.) o necrosis tisular amplia.

Los eosinófilos aumentan especialmente en enfermedades parasitarias o de hipersensibilidad (alérgicas).

La presencia de basófilos se incrementa principalmente en caso de hipersensibilidad o inflamaciones.

La disminución de estos tres tipos de leucocitos no tiene mucha significación clínica en la especie porcina.

SERIE PLAQUETARIA

Las plaquetas o trombocitos son fragmentos citoplasmáticos que se forman a partir de los megacariocitos de la médula ósea.

Tienen gran importancia en la coagulación sanguínea, ya que se agregan unas con otras en respuesta a diversos estímulos, participando en la formación del coágulo y la cicatrización.

Las plaquetas aumentan en enfermedades inflamatorias, anemia hemorrágica, etc.

Valores disminuidos de plaquetas se producen por diferentes mecanismos como la reducción de la producción de plaquetas (intoxicaciones), el secuestro de plaquetas (hemorragia aguda grave, endotoxemia o anafilaxia) o el aumento de la destrucción plaquetaria (origen inmunitario o fármacos).

 

El análisis bioquímico permite la determinación de distintos parámetros en el suero sanguíneo como:

Se pueden determinar numerosos parámetros (metabolitos, enzimas, iones, principios inmediatos, etc.) que permiten evaluar el correcto funcionamiento de los diferentes sistemas orgánicos.

Para ello se diseñan diferentes perfiles bioquímicos (Tabla 1), seleccionando los parámetros más significativos en función del objetivo del análisis y de la especie animal (en este caso, porcina).

El tipo de muestra sobre la que se realizan las determinaciones varía en función de los parámetros que vayan a analizarse, por lo que es imprescindible consultar con el laboratorio antes de realizar la toma de muestras.

Sangre entera

Tubos con EDTA (ácido etilendiaminotetracético) para la realización de hematología completa.

En ocasiones será necesario usar tubos con heparina como anticoagulante para conservar la sangre entera en determinaciones específicas en las que el EDTA interfiere en el resultado por su interacción con el analito a estudiar.

Para la correcta toma de muestra de sangre entera para el estudio hematológico es esencial:

Llenar el tubo con EDTA con el volumen sanguíneo indicado en la etiqueta.

Homogeneizar con volteos suaves del tubo inmediatamente después de la extracción para evitar que la sangre coagule.

Suero sanguíneo

Tubos sin anticoagulante para la realización de la mayoría de los parámetros de bioquímica sanguínea.

Los tubos con fluoruro de sodio (NaF) permiten la conservación de la glucosa del suero sanguíneo para su posterior análisis.

En el caso de tubos sin anticoagulante:

Se deben dejar a temperatura ambiente y ligeramente inclinados hasta que se forme el coágulo de sangre.

Una vez que se ha formado el coagulo, es recomendable separar el suero en un tubo limpio antes de enviarlo al laboratorio en condiciones de refrigeración.

Otros tipos de muestras

Orina, saliva, calostro, heces, etc.

La incorrecta toma y conservación de muestras afectará a la fiabilidad de los resultados.

En caso de trombocitopenia debe confirmarse que no se trata de artefactos debido a la activación plaquetaria por el proceso de extracción. Para ello, se debe valorar la presencia de coágulos en la sangre y de agregación de plaquetas en un frotis sanguíneo.

Otra alteración muy frecuente es la hemólisis de la sangre durante la extracción que alterará la interpretación del recuento hematológico y modificará parámetros bioquímicos (como el incremento de la creatinquinasa al ser liberada desde el interior de los hematíes).

La gestación y la lactación son fases de gran exigencia energética para la cerda, siendo momentos críticos, especialmente en las razas hiperprolíficas.

En este estudio se analizaron parámetros hematológicos y bioquímicos de hembras de raza Landrace x Large White, evaluando dos variables:

Nº de ciclo reproductivo: hembras jóvenes de 1er y 2o ciclo y hembras adultas de 3 a 7 ciclos de gestación.

Estado fisiológico: toma de muestra en el periparto (5-7 días preparto) y en el destete (tras 26 días de lactación).

Para tener una evaluación global de los diferentes sistemas orgánicos se analizaron los siguientes parámetros:

En la Tabla 2 se presentan los resultados obtenidos en función del estado fisiológico.

  Hemograma  

Las hembras mostraban anemia, tanto en el preparto como al destete, aunque se observó una mejoría de los valores en el destete.

No obstante, se consideró una anemia fisiológica durante la gestación, no encontrando diferencias significativas en función del número de partos.

  Perfil Energético  

En el periparto, los NEFAs fueron superiores en hembras de 1er y 2º parto con respecto a las cerdas multíparas (datos no mostrados), si bien estaban todos dentro del rango de normalidad para la especie. Además, un 25% de las hembras mostraban niveles elevados de cuerpos cetónicos (βHB). Ambos parámetros son indicadores de un estado de balance energético negativo.

Durante la gestación se produce una movilización de reservas corporales para obtener energía. Las moléculas procedentes de la pérdida de grasa no pueden utilizarse en el ciclo de Krebs por un descenso en la glucólisis y son derivadas a la producción de cuerpos cetónicos como el beta-hidroxibutirato, llevando a un estado de cetosis.

En este caso se evidencia una mayor movilización de reservas lipídicas en cerdas jóvenes con presencia de cetosis subclínica en el 25% de los animales.

  Perfil Hepático  

Se observó un aumento en la enzima AST con respecto a los rangos de referencia, indicando cierto daño hepático al final de la gestación, muchas veces asociado al esfuerzo metabólico en ese estado fisiológico.

  Perfil Proteico  

Las proteínas totales y la creatinina presentaron un descenso significativo (p<0,05) entre el preparto y el destete, muy probablemente como consecuencia de la alteración hepática.

  Proteínas de Fase Aguda  

Los niveles de Pig-MAP fueron significativamente mayores en cerdas jóvenes en el momento del destete, indicando que las hembras en crecimiento sufren mayores niveles de estrés durante la gestación y la lactación.

En conclusión, el estudio hematológico y bioquímico evidenciaron desviaciones respecto a los valores de referencia debido a su estado fisiológico, siendo mayor en caso de las hembras de 1er y 2o parto, lo que pone de manifiesto de forma objetiva el mayor esfuerzo en este grupo de edad, siendo en todo caso procesos subclínicos.

En futuros estudios se evaluará la posible relación de los valores bioquímicos con índices productivos como el número de nacidos vivos o el peso al nacimiento.

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BIBLIOGRAFÍA

Cantín Labarta. J (2019). Estudio de las alteraciones metabólicas producidas por deficiencias nutricionales en relación con la productividad de las cerdas hiperprolíficas. Trabajo final de grado. Valencia: Universidad Cardenal Herrera CEU.

Chacón, G. y Villa, A. (2009). “Biopatología clínica en producción porcina”. Suis,57, pp. 56-64. Duque, P. et al. (2013). “Evaluación del perfil metabólico lipídico en cerdas gestantes y su relación con la nutrición fetal”. MVZ Córdoba,18(2), pp. 3543-3550.

Kaneko, J.J., Harvey, J.W. y Bruss, M.L. (2008). Clinical biochemistry of domestic animals. Academic Press.

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