Disentería hemorrágica – Todo aquello que no me habían contado…

 EPIDEMIOLOGÍA

Brachyspira hyodisenteriae se encuentra fuertemente adaptada al intestino del cerdo, tanto que difiere significativamente del resto de espiroquetas, sobre todo en el sistema de transporte de aminoácidos y procesos de metabolismo, probablemente por la abundancia de nutrientes que existe en el intestino del cerdo.

Cabe destacar también la existencia de secuencias codificadoras de proteínas muy similares a las de Escherichia spp. y Clostridium spp. lo que nos sugiere que, habitando en el intestino del cerdo existen numerosas oportunidades de intercambiar material genético con otras especies de bacterias (Bellgard et al.2009).

Esto hace que la batería genética de Brachyspira hyodisenteriae para fabricar “armas de destrucción en el hospedador” sea alta, sobre todo en la producción de hemolisinas que son las causantes en última instancia de la virulencia de cada cepa.

Recordad, B. hyodisenteriae por sí sola no es una bacteria capaz de generar un daño elevado en el hospedador, son los mecanismos de inflamación, como las hemolisinas, los que determinarán que esta bacteria cause más o menos perjuicio en el hospedador. Este hecho fue demostrado por por Andress et al. en 1968.

TRANSMISIÓN

En este apartado no revisaremos los diferentes mecanismos de transmisión de la disentería hemorrágica, ya que han sido puntualizados en numerosos artículos, pero sí haremos especial hincapié en el hecho de que ha sido descrita la transmisión entre explotaciones por medio de vectores como roedores y pájaros, si bien en estos últimos no se ha podido demostrar la transmisión al cerdo (Jensen et al. 1996). Es decir, no basta con que nosotros reforcemos nuestro control de disentería, es necesario que en granjas vecinas lo hagan también, al menos cuando sea una zona afectada por casos clínicos de la enfermedad.

Hecho a resaltar es la presencia de vegetación y escombros debidos a remodelaciones que haya podido sufrir la explotación. En pocas palabras, una escombrera en granja es un hotel de 5 estrellas para roedores que, entre otras patologías, pueden transmitir la disentería.

No obstante, gran parte de esta transmisión entre granjas será minimizada en gran medida si seguimos unas normas estrictas de bioseguridad, bien sabidas por todos, pero de difícil puesta en marcha en muchas situaciones, a veces de manera incomprensible.

Que Brachyspira hyodisenteriae sobrevive en el medio durante mucho tiempo es algo ampliamente demostrado (Chia et al.,1978). Por ello, debemos focalizar todos nuestros esfuerzos en eliminar la mayor cantidad de elementos de las instalaciones que puedan contener a esta bacteria. Nos referimos sobre todo a materia orgánica pero también a ropa, botas, material de inseminación, etc.

Un hecho con el que nos encontramos muy a menudo es que se comparten equipos y ropa entre diferentes zonas de la granja con y sin disentería. Esto, irremediablemente, nos llevará a por toda la explotación haciendo inefectivos los sistemas de limpieza y control mediante antimicrobianos.

No respetar los tiempos de secado entre limpieza y desinfección es un error bastante frecuente y observado en explotaciones de cebo que realizan numerosos ciclos de vaciado-llenado a lo largo del año para mantener su rentabilidad.

MECANISMOS DE CONTROL

  1.- DIETA  

A primera vista, no parece buena idea inundar un intestino con disentería, donde los procesos de inflamación están desbordados, con nutrientes y energía similares a los que daríamos a un cerdo con un intestino sano.

Es frecuente observar cómo se trabaja en multitud de aspectos para controlar la disentería hemorrágica pero la nutrición es poco menos que un campo prohibido.

Por otro lado, obviamos la interacción que B. hyodisenteriae tiene con la microbiota, que cambia conforme lo hace la dieta del animal, por eso es frecuente la descripción de repuntes de disentería hemorrágica en los cambios de dieta. Es también remarcable que B. hyodisenteriae actúa conjuntamente con bacterias anaerobias presentes en el animal facilitando la colonización y aumento de lesiones (Hampson et al. 2006).

  2.- ANTIBIOTERAPIA  

La antibioterapia es, a día de hoy, el mecanismo de control más efectivo frente a la disentería hemorrágica, si bien debemos tener en cuenta diferentes consideraciones:

1. No debemos tapar errores de manejo y bioseguridad con antibioterapia. El tratamiento con antibióticos es una herramienta más que tenemos disponible para lucha contra la disentería, sin embargo, no debemos depositar todas nuestras expectativas en el tratamiento antibiótico sin haber abordado la enfermedad desde un punto de vista holístico.
2. La determinación de Concentraciones Mínimas Inhibitorias (CMI) para los antibióticos disponibles es esencial. Es bastante común usar antibióticos de forma histórica y por tradición. Todas las publicaciones existentes nos indican que hay un aumento de resistencias bacterianas (entre ellas B. hyodisenteriae) a los antibióticos. Por esto, debemos usar el más sensible y de espectro más estrecho frente a la disentería hemorrágica.
3. Nuestro protocolo de control con antibioterapia debe tener fecha de “caducidad”. Si hemos abordado integralmente la enfermedad, habremos controlado la misma en la mayoría de casos y no será necesario el uso de medicación, preservándola por tanto para futuras ocasiones y manteniendo las cepas existentes dentro de nuestra explotación como sensibles a los antibióticos usados.

Figura 1. Determinación de Concentración Mínima Inhibitoria de varios antibióticos frente a Brachyspira hyodisenteriae (Kirchgaessner et al. 2016).

  3.- ANTIMICROBIANOS NATURALES  

Recientemente hemos vivido un auge de productos naturales para el control de la disentería hemorrágica que a priori muestran buena actividad in vitro frente a la bacteria (Lobova et al. 2004).

Sin embargo, se necesitan de más estudios para poder garantizar que son eficaces y que no muestran efectos adversos en los animales que los consumen.

También es importante reseñar que dependerá en gran medida de la cepa existente en la granja y de la presión de infección en la misma.

CONCLUSIÓN

Nos enfrentamos a una enfermedad reemergente que se está tornando difícil de controlar debido a un ambiente de reducción de uso de antimicrobianos y cierta laxitud en las medidas de bioseguridad y limpieza.

Debemos estar atentos también a otras medidas de control como correcciones en la dieta y aparición de productos naturales que deberán ser testados en granja y bajo los mismos requisitos que un antibiótico para determinar su eficacia y la no aparición de efectos adversos indeseables.

Andress CE, Barnum DA, Thomson RG. Pathogenicity of Vibrio coli forswine. I. Experimental infection of gnotobiotic pigs with Vibrio coli. Can JComp Med. 1968;32(4):522–528.

Bellgard, M.I.; Wanchanthuek, P.; La, T.; Ryan, K.; Moolhuijzen, P.; Albertyn, Z.; Shaban, B.; Motro, Y.; Dunn, D.S.; Schibeci, D., 2009. Genome sequence of the pathogenic intestinal spirochaete Brachyspira hyodysenteriae reveals adaptations to its lifestyle in the porcine large intestine. PLoS One 2009, 4, e4641, doi:10.1371/ journal.pone.0004641.

Chia, S.P.; Taylor, D.J. Factors affecting the survival of Treponema hyodysenteriae in dysenteric pig faeces. Vet. Rec. 1978, 103, 68–70. Hampson, D.J.; Fellstrom, C.; Thomson, J.R. Swine dysentery. In Diseases of Swine; Straw, B.E., Zimmerman, J.J., D’Allaire, S., Eds.; Blackwell Publishing Professional: Ames, IA, USA, 2006; pp. 785–805.

Jensen, N.S.; Stanton, T.B.; Swayne, D.E. Identification of the swine pathogen Serpulina hyodysenteriae in rheas (Rhea Americana). Vet. Microbiol. 1996, 52, 259–269.

Kirchgässner C., Schmitt S., Borgström A., Wittenbrink M.M., 2016. Antimicrobial susceptibility of Brachyspira hyodysenteriae in Switzerland.

Lobova, D.; Cizek, A. Bactericidal efficacy of two disinfectants against Brachyspira hyodysenteriae and one feed supplement against B. hyodysenteriae and B. pilosicoli. Vet. Med. Czech 2004, 49, 156–160.

Rubin, J.E.; Costa, M.O.; Hill, J.E.; Kittrell, H.E.; Fernando, C.; Huang, Y.; O’Connor, B.; Harding, J.C.S. Reproduction of mucohaemorrhagic diarrhea and colitis indistinguishable from swine dysentery following experimental inoculation with “Brachyspira hampsonii” strain 30446. PloS One 2013, 8, e57146, doi:10.1371/journal.pone.0057146.

Wills, R.W. Diarrhea in growing-finishing swine. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2000, 16, 135–161.

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