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02 May 2026
Enfermedad de Glässer en cerdos: variación antigénica de Glaesserella parasuis y estrategias de control
Glaesserella parasuis impacta la sanidad y el rendimiento de los lechones. Su variabilidad antigénica y transmisión temprana condicionan el control, donde la vacunación y el manejo sanitario son determinantes.
Glaesserella parasuis es una bacteria Gram-negativa perteneciente a la familia Pasteurellaceaey agente etiológico de la enfermedad de Glässer, una patología inflamatoria sistémica de elevada importancia sanitaria y económica para la porcicultura intensiva (1).
Clásicamente, G. parasuis ha sido considerada como una bacteria oportunista; sin embargo, determinadas cepas pueden comportarse como patógeno primario (2), especialmente en lechones jóvenes.
La transmisión de G. parasuis ocurre principalmente en la maternidad, siendo la cerda la primera fuente de transmisión de la bacteria.
Diferentes estudios han demostrado que, sobre el séptimo día de vida, prácticamente el 100% de los lechones ya se encuentran colonizados por la bacteria (3, 4). En esta etapa, la manifestación clínica de la enfermedad se encuentra controlada por los anticuerpos maternales transferidos a través del calostro (5).
Sin embargo, con el descenso progresivo de la inmunidad pasiva durante las semanas siguientes, particularmente entre la tercera y la quinta semana (5), y dependiendo de la virulencia de la cepa implicada, los mecanismos inmunológicos de contención de la infección resultan insuficientes.
Como consecuencia, G. parasuis puede atravesar las barreras mucosas, acceder al torrente sanguíneo y diseminarse de forma sistémica(6).
Un segundo momento crítico para la transmisión de la bacteria se produce en la fase de transición (maternidad – recría), sobre todo en sistemas que mezclan/agrupan lechones procedentes de diferentes granjas, una práctica común en Brasil (1).
La complejidad epidemiológica aumenta en función del número de orígenes implicados. Así, lechones de la granja A colonizados por G. parasuis serovar 1 (SV1) pueden entrar en contacto con el SV5, transmitido por animales de la granja B, y simultáneamente ser expuestos a variantes antigénicas diferentes del SV5 procedentes de la granja C.
Esta multiplicidad de combinaciones favorece la emergencia de infecciones polimicrobianas, en las que participan varios serovares y variantes antigénicas de G. parasuisfrente a los cuales los lechones carecen de inmunidad específica, lo que facilita el desarrollo de brotes de enfermedad de Glässer (7).
La enfermedad de Glässer se manifiesta con mayor frecuencia entre la quinta y la séptima semana de vida, periodo crítico asociado al descenso de la inmunidad maternal.
No obstante, animales de entre 70 y 100 días de edad también pueden desarrollar la enfermedad, especialmente en tres situaciones:
1- Ausencia de correspondencia entre los antígenos vacunales y los de campo.
2- Fallos en la inmunización (aplicación y protocol)
3- Deficiencias en las medidas de bioseguridad. Estas circunstancias son relativamente frecuentes en nuestros sistemas productivos.
Datos recientes del estado de Santa Catarina, uno de los principales polos de producción porcina de Brasil, han mostrado que G. parasuis fue el segundo agente infeccioso más asociado a la mortalidad en la fase de recría (pico de mortalidad máximo a la séptima semana de vida) (8).
Entre 2021 y 2024, catorce de los quince serovares clásicos de G. parasuis estuvieron involucrados en brotes de enfermedad de Glässer en nuestro país. Entre ellos, los serovares SV12, SV4, SV13 y SV5 fueron los más prevalentes, responsables por el 60,1% de los casos clínicos diagnosticados en nuestro laboratorio (12).
La proporción de cepas no tipificables (20,5%) es considerablemente elevada en Brasil, situación poco frecuente en otros países productores. En conjunto, estos hallazgos ponen de manifiesto el papel estratégico de G. parasuis en el contexto de las enfermedades respiratorias y sistémicas de los lechones en Brasil.
Las manifestaciones clínicas incluyen:
Cojeras por artritis fibrinosa
Disnea, resultado de la bronconeumonía y pleuritis
Apatía y dolor abdominal, asociados a peritonitis
Alteraciones neurológicas (marcha tambaleante, decúbito lateral con movimientos de pedaleo) derivadas de la meningitis (6, 9, 10, 11).
En la necropsia, las lesiones se caracterizan por serositis fibrinosa generalizada, que afecta a pleura (pleuritis), pericardio (pericarditis) y peritoneo (peritonitis). También se observan artritis fibrinosa y meningitis (6, 9). Estas alteraciones son típicas y constituyen la base del diagnóstico sindrómico.
Las pérdidas económicas asociadas a Glaesserella parasuis pueden producirse en tres fases, de manera independiente o acumulativa.
La primera está relacionada con la mortalidad temprana y los costes terapéuticos durante los brotes clínicos.
La segunda deriva de la reducción en el rendimiento zootécnico de los animales supervivientes, consecuencia de lesiones inflamatorias crónicas (pleuritis, peritonitis, pericarditis).
La tercera corresponde a las decomisos en matadero por lesiones residuales, lo que ocasiona pérdidas significativas para la cadena productiva.
El tratamiento de la enfermedad de Glässer se basa en la utilización de antibióticos, antiinflamatorios/analgésicos y antipiréticos.
En relación con los antimicrobianos, datos publicados por nuestro grupo indican que las cinco moléculas con mayor eficacia in vitrofrente a G. parasuis son: tildipirosina, fosfomicina, florfenicol, espectinomicina y ceftiofur (12, 13).
Entre los antiinflamatorios se destacan el meloxicam y flunixina meglumina, eficaces en el control del dolor y la inflamación.
La dexametasona se recomienda en los casos clínicos graves, con el fin de prevenir el choque sistémico inducido por elevados niveles de citocinas proinflamatorias (14). Como antipirético, se recomienda la dipirona, por su acción rápida y segura en cerdos.
La prevención de la enfermedad de Glässer se fundamenta en la vacunación. En Brasil se emplean tanto vacunas licenciadas como autovacunas, con el objetivo de inducir protección específica frente a G. parasuis.
En el grupo de las vacunas licenciadas, tres laboratorios destacan: el Laboratorio A comercializa una bacterina monovalente formulada con el serovar 5 (SV5); el Laboratorio B ofrece una bacterina bivalente compuesta por los SV1 y SV6; y el Laboratorio C ha lanzado en 2024 una formulación que incluye cepas deG. parasuis pertenecientes a los serovares 1, 4, 5 y un aislado no tipificable del clúster α (NT-α).
El principal diferencial técnico de esta última vacuna en relación a las otras dos es que todas las cepas vacunales sobreexpresan la proteína TbpB (cluster I e III), estrategia utilizada para ampliar el espectro de protección frente a cualquier tipo capsular de este agente (10, 15, 16, 17).
En el ámbito de las autovacunas, actualmente cinco laboratorios operan en Brasil desarrollando formulaciones específicas contra G. parasuis, bien de forma exclusiva contra este agente o en combinación con otros patógenos respiratorios.
Estas vacunas se producen a partir de cepas aisladas directamente de brotes clínicos en las granjas destinatarias, lo que confiere una mayor compatibilidad antigénica. Su desarrollo se ajusta a la Instrucción Normativa Nº 31 del Ministerio de Agricultura, Ganadería y Abastecimiento de Brasil (18).
El éxito de las vacunas, tanto licenciadas como autovacunas, en la prevención de la enfermedad de Glässer depende de dos factores fundamentales: la inmunogenicidad de la formulación (es decir, su capacidad de inducir títulos de IgGs funcionales) y la equivalencia antigénica entre las cepas vacunales y las circulantes en la granja.
En lo que respecta a la inmunogenicidad, los anticuerpos desempeñan un papel esencial en la protección contra G. parasuis, siendo fundamentales para controlar la infección e impedir la diseminación sistémica del agente.
Por ello, la inducción de títulos elevados de anticuerpos funcionales constituye un requisito indispensable para la efectividad de la vacuna (19).
En cuanto a la equivalencia antigénica, hemos demostrado, mediante la plataforma Smart Antigenicity Test (herramienta de diagnóstico inmunológico desarrollada por la empresa AFK Imunotech), que G. parasuis presenta una elevada complejidad, con variaciones antigénicas significativas incluso dentro de un mismo serogrupo (20).
En consecuencia, resulta imprescindible que las características antigénicas de la cepa vacunal coincidan con las de las cepas circulantes en la granja; de lo contrario, la protección conferida por la vacuna puede ser parcial o incluso inexistente.
Finalmente, a la luz de este panorama, en la conferencia titulada “Variación antigénica de Glaesserella parasuis y sus implicaciones prácticas en el control de la enfermedad de Glässer” presentaré a la audiencia una actualización exhaustiva sobre los avancesmás recientes relacionados con la epidemiología, patogénesis y inmunología aplicada al control de G. parasuis.
Referências
(1) Frandoloso R., Macedo N. Doença de Glässer. Doenças de Suínos. Porto Alegre2022. p. 1058. (2) Dazzi C.D., Dellagostin D., Guizzo J.A., et al. Glaesserella parasuis SV4 as primary agent in bronchopneumonia. XIV SINSUI; 2022; Porto Alegre, Brazil. (3) Kuchiishi S.S., Ramos P.S., Bresolin E., et al. Brazilian Clinical Strains of Actinobacillus pleuropneumoniae and Pasteurella multocida: Capsular Diversity, Antimicrobial Susceptibility (In Vitro) and Proof of Concept for Prevention of Natural Colonization by Multi-Doses Protocol of Tildipirosin. Antibiotics. 2023;12(12):1658. (4) Cerda-Cuellar M., Naranjo J.F., Verge A., et al. Sow vaccination modulates the colonization of piglets by Haemophilus parasuis. Vet Microbiol. 2010;145(3-4):315-20. (5) Dellagostin D., Klein R.L., Giacobbo I., et al. TbpB(Y)(167A)-based vaccine is safe in pregnant sows and induces high titers of maternal derived antibodies that reduce Glaesserella parasuis colonization in piglets. Vet Microbiol. 2023;276:109630. (6) Frandoloso R., Martinez S., Rodriguez-Ferri E.F., et al. Development and characterization of protective Haemophilus parasuis subunit vaccines based on native proteins with affinity to porcine transferrin and comparison with other subunit and commercial vaccines. Clin Vaccine Immunol. 2011;18(1):50-8. (7) Frandoloso R. Haemophilus (Glaesserella) parasuis: Infecção, diagnóstico e prevenção. XII SINSUI; 2019; Porto Alegre. (8) Menegatt J.C.O., Perosa F.F., Gris A.H., et al. Main Causes of Death in Piglets from Different Brazilian Nursery Farms Based on Clinical, Microbiological, and Pathological Aspects. Animals (Basel). 2023;13(24). (9) Dazzi C.C., Guizzo J.A., Prigol S.R., et al. New Pathological Lesions Developed in Pigs by a “Non-virulent” Strain of Glaesserella parasuis. Frontiers in Veterinary Science. 2020;7(98). (10) Guizzo J.A., Chaudhuri S., Prigol S.R., et al. The amino acid selected for generating mutant TbpB antigens defective in binding transferrin can compromise the in vivo protective capacity. Scientific Reports. 2018;8(1):7372. (11) Frandoloso R., Martinez-Martinez S., Calmettes C., et al. Nonbinding site-directed mutants of transferrin binding protein B exhibit enhanced immunogenicity and protective capabilities. Infect Immun. 2015;83(3):1030-8. (12) Bresolin E., Ribeiro V.A., Prigol S.R., et al. Perfil capsular e de sensibilidade aos antimicrobianos de cepas clínicas de Glaesserella parasuis causadoras de doença de Glässer no Brasil Sinsui 2025; Porto Alegre. (13) Peres P.R., Prigol S.R., Martín C.B.G., et al. Tildipirosin: An effective antibiotic against Glaesserella parasuis from an in vitro analysis. Veterinary and Animal Science. 2020;10:100136. (14) Frandoloso R., Martinez-Martinez S., Rodriguez-Ferri E.F., et al. Haemophilus parasuis subunit vaccines based on native proteins with affinity to porcine transferrin prevent the expression of proinflammatory chemokines and cytokines in pigs. Clin Dev Immunol. 2013;2013:132432. (15) Prigol S.R., Klein R., Chaudhuri S., et al. TbpB(Y167A)-Based Vaccine Can Protect Pigs against Glasser’s Disease Triggered by Glaesserella parasuis SV7 Expressing TbpB Cluster I. Pathogens. 2022;11(7). (16) Frandoloso R., Schryvers A.B. Structure-based antigen design: Targeting transferrin receptors to prevent respiratory and systemic disease of swine. International Pig Veterinary Society Congress – IPVS 2020; 2020; Rio de Janeiro, Brazil. (17) Frandoloso R., Chaudhuri S., Frandoloso G.C.P., et al. Proof of Concept for Prevention of Natural Colonization by Oral Needle-Free Administration of a Microparticle Vaccine. Frontiers in Immunology. 2020;11(2744). (18) MAPA. Instrução Normativa Nº 31, DE 20 DE MAIO DE 2003. Regulamento técnico para a produção, controle e emprefo de vacinas autógenas: MAPA; 2003. (19) Barasuol B.M., Guizzo J.A., Fegan J.E., et al. New insights about functional and cross-reactive properties of antibodies generated against recombinant TbpBs of Haemophilus parasuis. Scientific Reports. 2017;7(1):10377. (20) Tamanini M., Mori A.P., Petri R., et al. Antigenicity analysis as a tool to predict cross-protection between clinical strains of Glaesserella parasuis IPVS & ESPHM 2024; 2024; Leipzig, Germany.
